北京尿液外泌体分离蛋白检测

时间:2023年04月09日 来源:

差速离心法分离外泌体的实验原理:外泌体是一种小的(40-100nm)细胞外膜囊泡,目前进行外泌体分离的普遍方法是差速离心法。应用差速离心法和粒径分析等是细胞外囊泡(EV)研究的重要步骤。已知细胞会分泌许多膜囊泡,这些囊泡的大小、分子含量及其形成机制各不相同具体取决于细胞的类型和当前状态。通常可以辨别出三个主要的EV群体:凋亡小体、脱落的囊泡和外泌体.凋亡小体是已知较大的囊泡,直径为800-5000nm,由凋亡后细胞的细胞质和质膜成分组成。脱落的囊泡和外泌体由非凋亡细胞释放。脱落的囊泡,也称为“胞外体”或有时称为“微泡”,是由质膜起泡产生的,一般的粒径尺寸范围为(50–1000nm)。超高速离心是常用的外泌体分离方法之一。北京尿液外泌体分离蛋白检测

外泌体分离方法之沉淀分离方法::基于聚合物的沉淀分离方法是利用超亲水聚合物来增强小尺寸颗粒(如外泌体)的沉淀。聚乙二醇的常用浓度在8%到15%之间变化。使用这种方法,将含有外泌体的溶液与聚合物一起孵育过夜,并在约10,000×g下进一步离心。外泌体分离方法之FFF分离法:FFF目前是一种很少使用但前景不错的一种外泌体分离方法。分离由横流力驱动,并基于颗粒的分子量或流体动力学直径。它包括高纯度、高效率和短时间处理,但迄今为止,FFF在外泌体分离中的使用案例较少,还有待进一步开发。郑州外泌体生产商外泌体受到多种因素的调控,例如细胞膜电位、氧化应激和信号转导途径等。

CHO细胞外泌体的分离和表征:CHO细胞是一种普遍用于生物制药蛋白质生产的宿主。CHO细胞中分离外泌体主要采用聚合物的沉淀(PBP)技术从分批培养中分离和富集细胞外泌体囊泡。分离后的外泌体可以通过多种方法来检测和表征分离的囊泡,这些分析包括动态光散射(DLS)和Zeta电位测量、电子显微镜(EM)和外泌体标记物分析、RNA和脂质分析等。根据制造商的指南,使用TEI总外泌体分离试剂盒(Invitrogen)从培养基中分离外泌体。将细胞培养基以2000×g离心30分钟以去除细胞和任何碎片;随后将上清液小心移至离心管管中,加入0.5倍体积的TEI试剂,充分混合并在4°C下孵育过夜。然后将样品在4°C下以10,000×g离心1小时,然后在弃去上清液后,将富含外泌体的颗粒重新悬浮在75μlPBS缓冲液中。然后将样品储存在-20°C下,直到需要进行后续分析。

外泌体的提取主要包括以下几种方式。一是免疫磁珠法,这种方法可以保证外泌体形态的完整,特异性高、操作简单、不需要昂贵的仪器设备,但是非中性pH和非生理性盐浓度会影响外泌体生物活性,不便进行下一步的实验。二是PS亲和法,该方法将PS(磷脂酰丝氨酸)与磁珠结合,利用亲和原理捕获外泌体囊泡外的PS。该方法与免疫磁珠法相似,获得的外泌体形态完整,纯度较高。由于不使用变性剂,不影响外泌体的生物活性,外泌体可用于细胞共培养和体内注射。2016.9《ScientificReports》杂志发表了该方法较新数据,表明PS法可提取相当高纯度的外泌体。外泌体的定量检测和分析可作为疾病诊断和治着中的新型指标。

外泌体通常被认为是细胞间信号分子,包含许多蛋白质、核酸、细胞因子、转录因子和其他细胞来源的颗粒。外泌体不只可以向局部环境传递信息,还可以向距离很远的细胞和组织传递信息。这可能作为一般信号和通信通路,但也可能参与致病基因扩散和恶性疙瘩进一步恶化。迄今为止,已证实外泌体存在于体液中,例如羊水、血清、母乳、附睾液、唾液、尿液、腹水和胸腔积液、支气管肺泡灌洗液、滑液和体外细胞培养上清液中。细胞排出的外泌体也可作为去除不必要的蛋白质和核酸的一种方式,例如,在细胞成熟(网织红细胞)或排泄系统(肾的内脏和小管)期间的外泌体。外泌体不是干细胞,是干细胞较精华的部分。东莞细胞外泌体生产商

外泌体的组成成分包括脂肪、糖、蛋白质等,对其组成成分的分析有助于了解其生物学功能和生理调节作用。北京尿液外泌体分离蛋白检测

外泌体的表征方法之非光学方法:非光学方法主要包括扫描电子显微镜(SEM)、透射电子显微镜(TEM)、冷冻电子显微镜(Cryo-EM)、原子力显微镜(AFM)、免疫检测方法(ELISA)、傅立叶变换红外光谱(FTIR)、可调谐电阻脉冲传感(TRPS)和单粒子干涉反射成像传感器(SP-IRIS)。SEM、TEM和AFM方法通常用于直接膜结构和形态测定,而ELISA检测提供各种结构颗粒(主要是蛋白质和受体)的检测和量化,例如,用于外泌体形态的确认。单粒子干涉反射成像传感器(SP-IRIS)也用于外泌体定量,但也可用于检测特定标记物和确定外泌体亚群。北京尿液外泌体分离蛋白检测

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